摘要

在干細胞定向分化實驗中，二氧化碳培養箱被視作“穩定器”。本文以人誘導多能干細胞向神經干細胞分化為主線，記錄實際操作中出現的溫場漂移、CO?濃度波動、交叉污染及批次放大四類問題。每節先描述現場現象，再給出利用獨立溫度探頭、紅外CO?傳感器、無菌棉簽+PCR檢測、多點校準驗證等儀器耗材進行診斷與修正的完整流程，最終形成一套可推廣的標準化操作方案，為干細胞規模化分化提供借鑒。

一、溫場漂移：探頭校準與微環境重構

問題描述：箱內設定37℃，但中央與門側溫差近2℃，局部出現細胞回縮、分化效率不均。

解決方案

1.將獨立溫度探頭置于四角及中央，連續記錄12h，繪制溫度云圖；

2.依據熱圖調整風扇轉速與擱板高度，并在門內側加裝導熱鋁板；

3.復測溫差降至0.3℃，鏡下觀察細胞形態恢復均一，分化效率差異不再顯著。

“穩定器”先穩溫度，校準探頭與微環境重構雙管齊下，為后續分化奠定均一基礎。

二、CO?濃度波動：紅外傳感器校準與氣流再分布

問題描述：箱內CO?設定5%，但紅外監測曲線出現周期性尖峰，導致培養液pH忽高忽低，細胞聚集邊緣出現空泡。

解決方案

1.用標準5%CO?鋼瓶外接紅外校準器，逐點標定傳感器；

2.發現進氣口直吹培養皿，改用360°環形擴散器分散氣流；

3.重新監測24h，CO?波動降至±0.1%，pH穩定在7.2±0.05，空泡消失。

“穩定器”再穩氣體，校準傳感器并重塑氣流，pH波動被鎖定，細胞重新進入同步分化節奏。

三、交叉污染：棉簽擦拭與PCR快檢聯合排查

問題描述：第3批次實驗出現不明貼壁雜細胞，懷疑箱內真菌污染。

解決方案

1.無菌棉簽蘸取生理鹽水，對內壁、風扇葉片、水盤進行五點采樣；

2.提取DNA后使用真菌通用引物PCR檢測，僅在風扇葉片檢出條帶；

3.立即更換HEPA過濾器，75%酒精整體擦拭，紫外過夜滅菌；

4.再次采樣PCR陰性，后續3批次細胞純度和分化標志物表達均正常。

“穩定器”亦需無菌屏障，棉簽快檢鎖定污染源，過濾器與紫外雙殺讓潔凈度回歸。

四、批次放大：多點驗證與程序固化

問題描述：由6孔板放大至三層細胞工廠，分化終點標志物表達出現批次差異。

解決方案

1.在同一培養箱內設置上、中、下三層獨立溫度探頭與CO?采樣口，連續監測48h；

2.發現頂層溫度略低、CO?略高，調整擱板間距并同步風扇轉速；

3.固化“37℃±0.3℃、5%CO?±0.1%、每12h換氣1min”標準程序；

4.連續三批次驗證，標志物表達趨于一致，細胞產量與活性均滿足臨床級要求。

“穩定器”最終靠程序固化，多點驗證將經驗轉化為標準，實現干細胞分化從實驗室走向規模制備的無縫銜接。

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