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細胞組織蛋白提取方法
閱讀：445 發布時間：2015-7-15| 提 供 商 | 上海恒遠生物科技有限公司 | 資料大小 | 139KB |
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| 資料類型 | WORD 文檔 | 瀏覽次數 | 445次 |
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細胞組織蛋白提取方法
Store at 2-8℃ for 12 months
For Research Use Only
一、 試劑盒說明
SDS 裂解液(SDS Lysis Buffer)是一種比較強烈的細胞組織裂解液。SDS 裂解液裂解得到的蛋白樣品可以用于常規的
Western、ChIP(染色質免疫共沉淀)等。SDS 裂解液的主要成分為 50mM Tris(pH8.1)，1% SDS 以及多種蛋白酶及磷酸 酶抑制劑。可以有效抑制蛋白降解。
用 SDS 裂解液裂解得到的蛋白樣品可以用 BCA 蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度。由于含有較高濃度的去垢劑等 干擾物質，不建議使用 Bradford 法測定由本裂解液裂解得到樣品的蛋白濃度。
應用方面：可以用于 PAGE，Western，免疫沉淀（immunol precipitation，IP）等。
二、 試劑盒組份
組份 | KGP706 | KGP706-100 | 儲存溫度 |
SDS 裂解液 | 50 ml | 100 ml | 2-8℃ |
三、操作步驟
Ⅰ 實體組織蛋白的提取
1． 在每 mL 冷 SDS 裂解液加入 10μL 100mM PMSF，混勻。冰上保存數分鐘待用。
2． 每 100mg 固體組織置于培養皿中，手術剪剪碎成 3mm×3mm 左右的小塊，加入 0.5～1 mL 冷 SDS 裂解液（如 裂解不充分可適當添加較多的裂解液；如需要高濃度的蛋白樣品，可適當減少裂解液用量），玻璃勻漿器上下手 動勻漿 15 次，直至充分裂解，注意低溫操作；
3． 充分裂解后，將組織勻漿液轉移到預冷的離心管， 10000 轉/分，4℃離心 5 min；
4． 取上清轉移至新的預冷的離心管中，蛋白定量（BCA 法）；
5． 分裝保存于-70℃,避免反復凍融，即可進行后續的 Western、ChIP 等操作。
Ⅱ 培養細胞蛋白提取
1．在每 mL 冷 SDS 裂解液加入 10μL 100mM PMSF，混勻。冰上保存數分鐘待用。
2．收集細胞，加入裂解液。
2.1 貼壁培養的細胞，吸去培養基后，加入 10mL/150mm 培養板的冷 PBS 洗兩次，每次振搖數次以盡量去除培養 液；加入上述適量配制好的 SDS 裂解液（加量參見下表），用槍吹打數下，使裂解液和細胞充分接觸。
2.2 懸浮培養的細胞（或用細胞刮子刮下的貼壁細胞），將細胞及培養液移至離心管中， 1000 轉/分離心 10 min， 再用 10mL/150mm 培養板的冷 PBS，1000 轉/分離心 5 min 洗兩次； 細胞洗滌后，轉至新的預冷的離心管中， 加入上述適量配制好的 SDS 裂解液（加量參見下表），置于 4℃搖床平臺上，溫和振蕩 15 min；
3． 充分裂解后（充分裂解后應沒有明顯的細胞沉淀）， 組織勻漿液轉移到預冷的離心管， 10000 轉/分，4℃離心
5 min；
4． 取上清轉移至新的預冷的離心管中，蛋白定量（BCA 法）；
5． 分裝保存于-70℃,避免反復凍融，即可進行后續的 PAGE、Western、ChIP 等操作。
RIPA 裂解液(弱)加量參考
細胞數量 | SDS 裂解液加入量 |
107 個 | 0.5 mL～1 mL |
5×106 個 | 0.2 mL～0.5 mL |
四、注意事項
? 需自備 PMSF。
? 所有接觸樣品的用具及試劑均需預冷。裂解蛋白的所有步驟都需在冰浴或 4℃進行
? 提取蛋白后，如有必要，可透析除去表面活性劑。
? 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。