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用NAT法替代傳統方法檢測限標準為什么存在差異?

閱讀:563      發布時間:2024-11-8
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在生物制品和細胞治療產品的質量控制中,支原體檢測是重要的一環。傳統的支原體檢測方法包括培養法和DNA染色法,然而,隨著技術的進步,核酸擴增技術(NAT)因其快速、靈敏和便捷的特點,逐漸受到行業內的青睞。NAT法在藥典中的使用并非毫無限制,其檢測限的設定,成為了一個重要的考量因素。

 

NAT法檢測限的設定背景

NAT法,如聚合酶鏈反應(PCR)和實時熒光定量PCRqPCR),通過擴增支原體的特定核酸序列進行檢測。這種方法相較于傳統的培養法和DNA染色法,具有更高的靈敏度和更短的檢測周期。然而,靈敏度的提升也帶來了更高的假陽性風險,因此,在藥典中設定合理的檢測限顯得尤為重要。

 

DNA染色法與培養法的差異

DNA染色法,通常使用熒光染料標記支原體DNA,通過觀察熒光信號來判斷支原體的存在。這種方法雖然比培養法更快速,但其靈敏度相對較低,且容易受到其他DNA的干擾。因此,當NAT法替代DNA染色法時,需要更高的檢測限以確保檢測的準確性。

培養法則是通過培養支原體菌落來觀察其生長情況,從而判斷支原體的存在。這種方法雖然準確,但耗時較長,且對實驗條件要求較高。因此,當NAT法替代培養法時,其檢測限可以相對較低,因為NAT法具有更高的靈敏度,可以在更短的時間內檢測到更少的支原體。

 

NAT法檢測限的具體設定

根據歐洲藥典的規定,當NAT法替代培養法時,其檢測限需達到10CFU/ml;而當NAT法替代DNA染色法時,其檢測限則需達到100CFU/ml。這一設定是基于對不同方法靈敏度和特異性的綜合考慮。

對于培養法而言,10CFU/ml的檢測限已經足夠靈敏,可以確保在大多數情況下檢測到支原體的存在。而對于DNA染色法,由于其靈敏度相對較低,因此需要將NAT法的靈敏度調整至100CFU/ml來確保檢測的準確性。

 

NAT法檢測限的驗證

為了確保NAT法檢測限的準確性,需要進行嚴格的驗證。這包括使用標準品進行靈敏度測試,以及與傳統方法進行對比實驗。標準品通常包含已知數量的滅活支原體,可以用于評估NAT法的檢測靈敏度。同時,與傳統方法的對比實驗可以確保NAT法的檢測靈敏度不低于傳統方法。德國MB公司的10CFU100CFU的靈敏度標準品,為許多科研用戶在支原體檢測方法學驗證方面,提供了可靠的幫助。

 


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