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技術文章

人正常組織來源細胞染色體制備方法

閱讀:592          發布時間:2017-4-11

1、人正常組織來源細胞實驗材料 
培養液(PRMI 1640、M199、DMEM等),小牛血清、0.025%胰蛋酶、秋水仙素,刻度離心管,直吸管及彎頭吸管,培養瓶或皿、KCL、甲醇、冰乙酸、載玻片。 
2、培養液配制 
培養液 85-95% 
小牛血清 5-15% 
雙抗(選擇) 100u/ml 
3、人正常組織來源細胞操作過程 
(1)培養細胞:選擇處于指數生長期、用大瓶培養的80-90%匯合單層培養細胞; 
(2)終止培養:當有大量圓形發亮細胞出現時,加秋水仙素0.01-0.03ug/ml培養混合液,置溫箱繼續培養6-10小時以抑制分裂期細胞停止于分裂中期;(3)聚集細胞: 
(A) 搖動法: 
可利用分裂中期細胞變圓與底物附著不牢特點,此時可持培養瓶,左右反復橫向水平搖動,可使90%的中期分裂細胞從瓶壁脫落; 
(B) 消化法: 
將培養液倒入離心管內,給培養瓶內加0.025%胰蛋白酶液0.5-1ml/瓶,水平左右搖動,便培養瓶底壁面*接觸消化酶,稍后用彎頭吸管吹打,待細胞*脫落后,加入3-5ml前培養終止消化。用吸管移入裝有培養液的離心管內2000rpm10分鐘。棄上清液,留沉淀細胞; 
(4)低滲處理:給沉淀細胞加頂溫的37℃0.075MKCL8ml左右,用吸管打均勻,在溫箱中靜置20-30分鐘; 
(5)預固定:向低滲處理適當的離心管中加新鮮配制的3∶2甲醇,冰乙醇固定液1-2ml,用吸管輕松吹打調勻,此措施能起到使細胞表面輕微固定,可防止固定后細胞粘連成塊。 
(6)固定:800-1000rpm10分鐘,棄上清液加新鮮配制的3∶2甲醇冰乙酸固定液10ml,加入時要沿管壁慢慢加入,后輕輕吹打,封口后室溫靜置30分鐘以上,反復三次; 
(7)制片:末次離心后,倒掉上清液,留沉淀細胞,人正常組織來源細胞加新鮮配制固定液0.5ml左右,混勻后冰片制片,其它同外周血方法。

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