豬胃腸炎流行腹瀉輪狀TGEVPEDVPRV-A熒光PCR說(shuō)明書(shū)

【產(chǎn)品名稱】

通用名稱：豬傳染性胃腸炎/豬流行性腹瀉病毒/豬A組輪狀病毒(TGEV/PEDV/PRV-A)???核酸檢測(cè)試劑盒(實(shí)時(shí)熒光-PCR法)

Name ：Porcine transmissible gastroenteritis / porcine epidemic diarrhea virus / swine group A rotavirus (TGEV/PEDV/PRV-A) nucleic acid detection kit (real-time fluorescence -PCR)?

【包裝規(guī)格】48T/盒

【預(yù)期用途】

豬傳染性胃腸炎/豬流行性腹瀉病毒/豬A組輪狀病毒(TGEV/PEDV/PRV-A)???感染引起的豬急性、熱性、高度接觸性傳染病。其特征為高熱，網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)出血，死亡率高。家養(yǎng)豬和野豬都可以被感染，而且不分品種和年齡。

本試劑盒適用于檢測(cè)分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等樣本中的豬傳染性胃腸炎/豬流行性腹瀉病毒/豬A組輪狀病毒(TGEV/PEDV/PRV-A)???，用于豬傳染性胃腸炎/豬流行性腹瀉病毒/豬A組輪狀病毒(TGEV/PEDV/PRV-A)???感染的輔助診斷。

【檢驗(yàn)原理】

本試劑盒根據(jù)豬傳染性胃腸炎/豬流行性腹瀉病毒/豬A組輪狀病毒(TGEV/PEDV/PRV-A)???基因組設(shè)計(jì)特異性引物和探針，用熒光 PCR 技術(shù)對(duì)核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè)，用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

名 稱 規(guī) 格

核酸提取液 1.5mL×2 管

酶液 50μL×1 管

反應(yīng)液 1.0mL×1 管

陽(yáng)性質(zhì)控品 50μL×1 管

陰性質(zhì)控品 250μL×1 管

注：

1）不同批號(hào)試劑不能混用。

2）試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標(biāo)示的檢測(cè)次數(shù)。

【儲(chǔ)存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融少于 7 次，有效期 12 個(gè)月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。

【標(biāo)本采集】

病死或撲殺豬，取分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等

【保存和運(yùn)輸】

上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃，長(zhǎng)期保存可置-70℃，但不能超過(guò) 6 個(gè)月，標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運(yùn)輸，嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1.樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1樣本前處理

組織樣品：每份組織分別從 3 個(gè)不同的位置稱取樣品約 1g，手術(shù)剪剪碎混勻后取

0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；全血樣本：待血凝固后，取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2DNA 提取

1)對(duì)上述處理好的標(biāo)本加入 50μL 核酸提取液，100℃恒溫處理 10min，13,000

rpm 離心 5min，取上清液轉(zhuǎn)移至新的 1.5mL EP 管，-20℃保存；

2)DNA 的提取也可以采用上海晅科生物科技有限公司生產(chǎn)的 DNA 提取試劑盒

（離心柱提取法），請(qǐng)嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。

2.試劑配制（試劑準(zhǔn)備區(qū)）

根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù)，設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽(yáng)性對(duì)照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表：

試劑 ASFV 反應(yīng)液 酶液

用量（樣本數(shù)為 N） 20μL 1μL

將混合好的測(cè)試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中，21uL/管。

3.加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的 DNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL，分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4.PCR 擴(kuò)增（核酸擴(kuò)增區(qū)）

4.1將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi)；

4.2設(shè)置好通道、樣品信息，反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL；

熒光通道選擇： 檢測(cè)通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）

NONE，ABI 系列儀器請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光，選擇 None 即可。

5.2結(jié)果判斷

陽(yáng)性：檢測(cè)通道 Ct 值≤35.0，且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線。

可疑：檢測(cè)通道 Ct 值>35.0，且出現(xiàn)明顯擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗(yàn)，重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤35.0 和明顯擴(kuò)增曲線者為陽(yáng)性，否則為陰性。

陰性：樣本檢測(cè)結(jié)果無(wú) Ct 值且無(wú)明顯的擴(kuò)增曲線。

【參考文獻(xiàn)】

[1]國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局. SN/T 1559-2010 非洲豬瘟檢疫技術(shù)規(guī)范[S].

[2]黃萍, 肖家勇, 歐陽(yáng)振宇. 非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 檢測(cè)方法的建立[S]. 中國(guó)動(dòng)物檢疫, 2010.

[3]董志珍, 侯艷梅, 趙祥平. 非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 檢測(cè)方法的建立[S]. 中國(guó)獸醫(yī)雜志, 2009.

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