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腦靜脈血管內皮細胞的的分離方法有哪些?

閱讀:428      發布時間:2025-3-4
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  腦靜脈血管內皮細胞的分離方法主要包括酶消化法和機械刮脫法,以下是具體的操作步驟:
 
  一、酶消化法
 
  材料準備:
 
  無菌溶液:所有用于培養的溶液都需在37℃水浴中預熱。
 
  血管選擇:通常選擇新鮮的腦靜脈血管,確保血管無損傷、無凝血阻塞。
 
  血管處理:
 
  將血管放入含有抗生素(如青霉素和鏈霉素)的D-Hanks液中。
 
  在血管兩端插入磨平的注射器針頭并用絲線扎緊。
 
  用注射器從一端注入D-Hanks液沖洗血管,直至流出的液體無血跡。
 
  酶消化:
 
  注入適量的膠原酶溶液(濃度通常為0.1%),使血管充盈。
 
  將血管放入37℃無菌的D-Hanks液中消化一段時間(如15分鐘)。
 
  細胞收集:
 
  收集血管內的酶溶液,并注入含血清的培養液(如M199培養液)沖洗血管。
 
  將收集到的液體合并于同一容器內,進行離心處理(如1000r/min離心7~10分鐘)。
 
  去除上清液,用含血清的培養液重新懸浮細胞備用。
 
  二、機械刮脫法
 
  血管準備:
 
  選擇適當長度的腦靜脈血管。
 
  用D-Hanks液將血管內、外沖洗干凈。
 
  刮取內皮細胞:
 
  在無菌條件下沿血管縱軸剪開,使血管內皮朝上向外暴露。
 
  再用D-Hanks液沖洗血管內壁。
 
  用刮刀輕輕刮取內膜表面的內皮細胞。刮取時動作應輕柔均勻,刮刀與表面的角度適中,避免損傷血管壁。
 
  細胞收集與處理:
 
  將刮下的細胞懸浮于培養液中。
 
  進行離心處理以去除雜質和上清液。
 
  用含血清的培養液重新懸浮細胞備用。
 
  注意事項
 
  無菌操作:整個分離過程需在無菌條件下進行,以避免細胞污染。
 
  酶的選擇與濃度:根據血管類型和大小選擇合適的酶類型和濃度。膠原酶是常用的酶之一,但不同來源和批次的膠原酶活性可能有所不同,因此在使用前需進行活性測定。
 
  消化時間:消化時間不宜過長或過短,以免影響細胞的活性和數量。通常需根據酶的活性和血管類型進行調整。
 
  細胞活力與純度:分離后的細胞需進行活力檢測和純度鑒定。常用的活力檢測方法包括臺盼藍染色法、MTT法等;純度鑒定則可通過免疫熒光染色、流式細胞術等方法進行。

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