一、準備工作：6孔板,marker筆,直尺,無血清培養基,完quan培養基,PBS,離心管,胰酶。
二、實驗步驟：培養板劃線一計數一鋪板一細胞劃線一清洗一培養并觀察一結果分析
1.使用marker筆在6孔板背后，用直尺均勻地劃橫線，每隔0.5~1cm劃一道，橫穿過孔，每孔至少穿過5條線。
2.通過胰酶消化細胞制備細胞懸液。細胞計數后鋪板，確保每組細胞鋪板密度一致，一般在孔內接種約5-10×105個細胞（可根據細胞的生長速度調整接種數量）。
3第二天，使用移液槍槍頭（20ul），與細胞平面垂直，在細胞層上沿著marker筆印記進行劃痕（畫十字）。
4.劃痕完成后，吸取舊培養基，然后使用無菌PBS洗滌細胞3次，洗去劃痕下的細胞，使留下的間隙肉眼可見清晰。接著加入新鮮無血清或低血清（<2%）的培養基，使用顯微鏡拍照，作為對照組。
根據需要設立實驗組和對照組。對于不需要藥物的空白對照組，只需添加等量的無血清培養基即可；而藥物干預組則需加入含藥物的無血清培養基。
5.首先需將細胞置于37℃、5%CO2的培養箱中進行培養。接著，在不同時間點（如0、6、12、24小時），取出細胞進行顯微鏡觀察，并拍照記錄。
6.劃痕實驗的數據分析，通常有兩種主要方法：
第一種是根據細胞的遷移距離進行統計。這一方法通過比較初始劃痕線與后續觀察點的劃痕距離來評估細胞的遷移能力。
第二種方法是通過劃痕面積來進行分析。這種方法則通過對比初始劃痕線與后續觀察點的劃痕面積來評估細胞遷移的情況。在進行數據統計分析時，這兩種指標都可以被有效地使用來評估細胞的遷移能力。
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