1968年Miles和Hales建立了利用核素標記的抗體檢測抗原的放射分析法，為了與放射免疫分析區別，故稱免疫放射分析技術（immunoradiometric assay，IRMA）。由于它應用核素標記抗體作為示蹤劑，在反應體系中加入過量的抗體，待測抗原（或標準品）與和核素標記抗體進行全量反應，故亦稱非競爭性免疫分析法。IRMA與RIA相比較有以下特點：

1、IRMA反應系統中應用的標記物為免疫球蛋白。易于提純和進行碘化標記，標記抗體的比活度較高，有利于提高分析的靈敏度，且不同抗體的標記方法基本相同；而在RIA中應用的標記物是抗原。抗原種類繁多，化學結構各異，較難獲得純品，標記方法亦多種多樣。

2、在IRMA反應系統中使用過量的標記抗體，直接與抗原結合，不存在競爭結合的復雜反應，因此反應速度較快，即使使用親和力較低的單可隆抗體，也能滿足實驗要求；而在RIA中抗體是微量的，所以一定要用高親和力的多可隆抗體

3、IRMA使用的標記抗體和固相抗原在反應中都是過量的，只有待測樣品加樣誤差才會影響分析結果，因此IRMA的批內和批間變異（CV%）比較小；而RIA使用的抗體和標記抗原在反應中是固定量的，加樣誤差可嚴重影響測定結果。

一、基本原理

將核素標記在抗體上，然后以過量的標記抗體與待測抗原結合，未結合的標記抗體通過和固相的抗原免疫吸附劑結合而去除，溶液中的放射性與待測抗原的含量呈正相關。根據檢測過程的操作步驟不同，有以下幾種類型

1、直接IRMA法

將待測抗原與過量的標記抗體進行溫育，使二者結合，然后加入固相抗原免疫吸附劑再次溫育，吸附游離的標記抗體。離心去除沉淀物，測定上清液中放射性強度，根據標準曲線即可得知待測樣品中抗原的含量。

2、雙抗體夾心IRMA法

在待測抗原內依次加入固相抗體和標記抗體，反應后形成固相抗體（Ab1）-抗原-標記抗體（Ab2）復合物，洗滌去除游離的標記抗體，測定固相抗體或載體上免疫復合物的放射性強度，根據標準曲線即可得知待測樣品中抗原的含量。此法僅用于檢測有多個決定簇的多肽和蛋白質抗原。

3、間接IRMA法

此法是在上述雙抗體夾心法的基礎上，進一步改良為用核素標記抗Ab2的抗體（羊抗兔或抗鼠的IgG），反應后形成固相抗體（Ab1）-抗原-Ab2-*Ab3（標記抗抗體）的四重免疫復合物。其中，Ab3可作為通用試劑，可省去標記針對不同抗原的特異性抗體。

4、BSA-IRMA法

是將生物素-親合素系統（BSA）引入免疫放射分析，建立的新一代IRMA。此法zui大的優點是使用生物素化抗體和以核素標記親合素為示蹤劑，可以通用于甾體類、前列腺素等小分子物質的檢測。由于1個抗體分子上可標記數十個生物素分子，而每個親合素又可與4個生物素分子結合，從而產生多級放大效應。同時生物素與親合素之間的親和力要比抗原抗體間的親和力大10萬-100萬倍，二者結合極為穩定，因此，使其靈敏度、特異性和精密度都大大提高。目前一些超靈敏度的IRMA分析試劑盒就是應用上述原理制成的。

二、基本試劑及材料

1、標記抗體

2、固定抗原吸附劑

3、標準抗原

4、待測樣本

5、γ計數儀和低溫離心機

三、操作方法

以固相雙抗體法測定血清中促甲狀腺素（TSH）為實例

1、按下表逐一加樣（加樣量為ml，均設雙復管）

混勻，37℃溫育120min

棄上清（T*除外，以下同），加2ml洗滌液，放置2min

棄上清，再加2ml洗滌液，放置2min

棄上清，將各管倒置在吸水紙上

2、用γ計數儀分別測量各管放射性強度，以兩管cpm的均值表示，分別計算結合率（B%，即B/T* ´100%）

3、用B%為縱坐標，不同濃度的TSH標準品為橫坐標繪制標準曲線，然后根據檢測管的B%，從標準曲線中即可查得相應的TSH含量