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WB最容易忽略的幾個細節

來源:上海滬震生物科技有限公司   2021年11月29日 15:45  

作為 WB 的新手或老手,可能已經對 WB 實驗要點了然于胸,例如,需使用新鮮樣本,根據蛋白分子量選擇合適孔徑的轉印膜,根據抗體選擇適當的稀釋液,根據 ECL 液靈敏度調整二抗稀釋度等等。


但是,作為細節決定成敗的實驗,仍有幾個極易被忽視的細節和問題。


Q1:什么是 WB 陽性對照?β-actin 難道不是陽性對照嗎?

Q2:用什么裂解液裂解樣本?

Q3:WB 需要超聲嗎?

Q4:對于磷酸化蛋白,封閉需要用 BSA 嗎?


1)究竟什么是 WB 實驗的陽性對照?為什么要設立陽性對照?


陽性對照(Positive Control)是已知或*有目的蛋白表達的樣本。當對一個靶標并無檢測經驗時,在實驗初期,強烈建議增加陽性對照幫助排查一系列問題,例如,待測樣本中該靶標的表達量、操作步驟、抗體表現等。


而內參蛋白如 β-actin, GAPDH 等,一般在樣本中高表達,作為管家蛋白而用來對比不同樣本間的上樣量 (Loading Control),并非目的蛋白的陽性對照。


與陽性對照相對應的,還有陰性對照,即不表達靶標蛋白的樣本。如圖 1 所示,利用使用抑制劑或生長因子處理,制備針對 p-AKT(Ser473) 的陰性或陽性對照。


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圖 1:使用 Phospho-Akt (Ser473) (D9E) XP® Rabbit mAb #4060(上)或 Akt (pan) (C67E7) Rabbit mAb #4691(下),對未經處理或經 LY294002/Wortmannin 處理的 PC-3 細胞、經血清饑餓或 PDGF 處理的 NIH/3T3 細胞提取物進行蛋白質印跡分析。


如何選擇陽性對照?

a. 總蛋白的陽性對照


選用明確表達該蛋白的細胞或組織樣本;可參考說明書示例圖或數據庫。如下圖所示,Saos-2 細胞高表達 RUNX2,適宜作為陽性對照樣本,而 LNCaP 細胞不表達該靶標。


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圖 2:使用 RUNX2 (D1L7F) Rabbit mAb #12556 和 β-Actin (D6A8) Rabbit mAb #8457, 對 Saos-2 和 LNCaP 細胞的提取物進行蛋白質印跡分析。


b. 翻譯后修飾蛋白的陽性對照


并非所有的細胞都有基礎的翻譯后修飾水平(如磷酸化)的表達。如圖 3 所示,不同的細胞 p-AKT(Ser473) 的基礎水平差別非常大。有些靶標需要合適的刺激條件(包括誘導因子、劑量和時間窗)使蛋白獲得修飾。您可查看說明書、陽性對照處理表,或者通過廣泛閱讀文獻,了解處理方式,并結合預實驗摸索條件。


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圖 3:使用 Phospho-Akt (Ser473) (D9E) XP® Rabbit mAb 檢測不同樣本中靶標的表達。




2)裂解樣本用什么裂解液?


選擇裂解液的考慮因素為樣本種類:細胞,組織還是分離出的細胞組分。


對于全細胞裂解,建議使用 Cell Lysis Buffer(#9803)、RIPA 緩沖液(#9806)或 SDS 上樣緩沖液 (#7722)。Cell Lysis Buffer 由于不含會使蛋白變性的強力去垢劑,僅含 1%Triton,使其可在多種實驗中被使用(如 WB、IP)。RIPA 緩沖液含有 NP40 和脫氧膽酸鈉,變性能力更強,可以裂解細胞或者組織。SDS 上樣緩沖液也可以裂解細胞樣本,但會干擾后續的 BCA 測定。


使用裂解液裂解時,需提前加入蛋白酶抑制劑或磷酸酶抑制劑,以抑制內源性蛋白酶對細胞蛋白的降解和磷酸酶的去磷酸化作用。閱讀裂解液說明書,來明確是否需要額外添加蛋白酶抑制劑(PMSF #8553 或 Protease Inhibitor Cocktail #5871)或者磷酸酶抑制劑(Phosphatase Inhibitor Cocktail #5870)。對于 Cell Lysis Buffer(#9803)、RIPA 緩沖液(#9806),僅需補充 PMSF 即可。


對于細胞組分分離,則可以通過組分分離試劑盒完成。Cell Fractionation Kit #9038 可方便快速的分離細胞組分用于下游分析,通過移液和離心的方式,分步獲得細胞組分(圖 4)。


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圖 4:使用 Cell Fractionation Kit #9038,對 HeLa 細胞的細胞組分進行蛋白質印跡分析,結果表明蛋白在細胞漿、細胞器/膜以及胞核/細胞骨架的定位。全細胞裂解物 (WCL) 表示總蛋白。細胞漿蛋白 (Cyto) 使用 CIB 緩沖液進行分離。膜和細胞器蛋白 (Mem) 使用 MIB 緩沖液進行分離。胞核和細胞骨架蛋白 (Nuc) 使用 CyNIB 緩沖液分離。


3)裂解后是否需要超聲?


樣本裂解后,建議進行超聲。超聲可以破壞膜結構,斷裂 DNA,降低樣本的粘稠度,讓樣本更加均質化,增加蛋白的溶解,提高實驗結果的一致性。對于核蛋白或者膜相關蛋白,超聲步驟尤為重要 (圖 5)。


超聲步驟為冰上 3 次  5 秒的超聲(50% 輸出功率),控制超聲探頭位置,避免產生氣泡。如沒有超聲儀,可用 1 mL 注射器針頭,冰上反復抽打裂解液 5~10 次,達到類似于超聲的效果。


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圖 5:使用 Phospho-Histone H3 (Ser10) Antibody#9701 對超聲或者未經超聲處理的細胞裂解液進行檢測


4)封閉:BSA 還是奶粉?


封閉的目的是減少由一抗或二抗的非特異性結合引起的背景。BSA 僅含有一種蛋白質,分子量為 60KD。而奶粉則含有多種蛋白質,所以封閉作用更佳(圖 6)。


有文章指出奶粉中的磷酸酶可影響磷酸化信號,那磷酸化蛋白還能用牛奶嗎?我們的回答:是的。二十余年的磷酸化蛋白抗體研發經驗告訴我們,新鮮配置的牛奶不會對磷酸化信號產生任何影響,但隨著牛奶儲存時間的延長(即便在 4 ℃),就可能使磷酸化信號下降。且牛奶封閉更加全面,使得磷酸化靶標識別特異性更佳。


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圖 6:使用 Phospho-Akt (Thr308) (D25E6) XP® Rabbit mAb #13038,檢測經 PDGF 處理的 3T3 細胞樣本,BSA 封閉的結果中可見背景和雜帶,而牛奶封閉的結果背景更干凈,信號強且清晰。


封閉時使用 5% 脫脂奶粉-TBST,搖床上室溫封閉 1 h。如后續使用熒光發光法,則封閉時不可含有 Tween® 20。二抗孵育時,也推薦用 5% 脫脂奶粉-TBST 稀釋二抗,降低背景。注意,需使用實驗級脫脂奶粉(Nonfat Dry Milk #9999),食品級奶粉不可用于實驗。



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