在細胞培養過程中，貼壁生長是許多細胞類型（尤其是哺乳動物細胞）的基本特性。以下是培養細胞時細胞貼壁的關鍵點：

1. 培養基選擇：根據細胞類型選擇合適的培養基，例如人結腸癌細胞HCT 116需要5A全培養基，而SW 620則需要DMEM全培養基。全培養基通常由基礎培養基、血清（如FBS）、雙抗（青霉素鏈霉素）按特定比例配制。

2. 換液：當細胞未達到約80%匯合度時，可以僅換液而不傳代。快速生長的細胞如HCT 116和SW 620，適合一天一換液，兩天一傳代，但具體頻率應根據細胞狀態調整。

3. 傳代步驟：

1) 消化：使用胰酶（0.25% TrypsinEDTA）消化，注意消化時間，避免過長導致細胞損傷，通常510分鐘。

2) 終止消化：加入全培養基終止消化，并用移液槍輕柔吹打使細胞分散。

3) 離心（可選）：離心后吸去上清，加入適量培養基重懸，根據需要進行分瓶。

4. 細胞狀態：細胞貼壁生長時，應保持在對數生長期，避免達到匯合度100%導致接觸抑制，影響細胞增殖。

5. 凍存：細胞凍存需使用凍存液（90%全培養基 + 10% DMSO），遵循慢凍原則，從4℃逐漸降至80℃，最終移至液氮保存。

6. 注意事項：

1) 無菌操作至關重要，防止污染。

2) 調整胰酶濃度和消化時間以適應不同細胞類型。

3) 細胞密度適中，避免過密導致傳代后漂浮。

4) 保持培養箱內CO2濃度和溫度穩定，確保pH值適宜。

5) 定期檢查細胞活力和形態，及時處理問題。

通過以上步驟和注意事項，可以有效維持貼壁細胞的健康生長和傳代。

培養細胞時避免細胞貼壁不佳，可以通過以下方法：

1. 胰蛋白酶消化恰當：胰蛋白酶用于使細胞從培養表面脫落，但消化時間過長或濃度過高會損傷細胞膜。應每隔一分鐘觀察并輕輕晃動培養瓶，待細胞大部分脫落時立即添加培養基終止消化。對于難消化的細胞，可以采用“四步消化法”，即先不加胰酶清洗，再用少量培養基吹打，然后分批加入胰酶消化，每次觀察細胞狀態，避免過度消化。

2. 輕柔操作：在細胞傳代或接種過程中，避免劇烈震蕩或吸吐，減少機械損傷。操作時應輕拿輕放，尤其是對脆弱的細胞株。

3. 控制接種密度：過高的細胞密度會導致競爭營養和空間，過低則缺乏必要的細胞間相互作用。根據細胞類型，通常保持在7080%匯合度進行傳代，以維持最佳生長狀態。

4. 檢測和預防污染：支原體和其他微生物污染會影響細胞貼壁。使用無菌試劑，定期檢測培養基和細胞庫，一旦發現污染，及時清理并丟棄受污染的細胞。

5. 調節培養環境：確保培養箱內的溫度、濕度和CO2濃度適宜，避免pH值異常，因為不恰當的CO2濃度會影響培養基pH值，進而影響細胞貼壁。

6. 了解細胞特性：不同細胞株的貼壁特性不同，有的需要特定的附著基質。查閱細胞系的使用說明，了解其生長特性和傳代方式。

7. 避免老化細胞：細胞老化會影響其貼壁能力，及時傳代，控制細胞代數，避免長期培養導致的細胞衰老。

8. 調整培養基成分：某些細胞可能對特定成分敏感，如pH值過高，可使用無菌醋酸溶液調整，或調整培養基中的NaHCO3濃度。

9. 使用適宜的培養基和血清：根據細胞類型選擇合適的全培養基和血清，確保營養供應平衡。

10. 觀察與記錄：每日觀察細胞狀態，記錄培養條件，及時調整培養策略，如細胞狀態變差，可能需要更換培養基或調整傳代頻率。

通過上述措施，可以有效避免細胞貼壁不佳的問題，確保細胞培養的順利進行。