AGS細胞常見問題及處理策略
AGS細胞(人胃腺癌細胞)在培養過程中易出現貼壁性差、污染及異常增殖等問題,需針對性優化操作流程與環境控制,以保障細胞正常生長與實驗可靠性。
一、貼壁性差:優化培養條件與操作細節
培養基與血清適配性
確認使用含10%胎牛血清(FBS)的DMEM或RPMI-1640培養基,血清需經56℃滅活30分鐘以去除補體干擾。若細胞仍貼壁不佳,可嘗試添加0.1%ECM膠(如Matrigel)預涂培養瓶,增強細胞黏附。
避免頻繁更換血清品牌,防止因成分差異導致細胞適應不良。
傳代操作規范
消化時使用0.25%胰酶-EDTA,37℃孵育1-2分鐘,待細胞變圓后立即終止消化(加入2倍體積培養基),避免過度消化損傷細胞膜。
傳代密度控制在1:3至1:4,過低密度(如<1:6)易導致細胞接觸抑制失效,貼壁能力下降。
培養環境穩定
維持37℃、5%CO?、飽和濕度條件,避免溫度波動(如頻繁開關培養箱)或氣體濃度異常(如CO?濃度>6%)影響細胞代謝。
二、污染:嚴格無菌操作與早期干預
細菌/真菌污染
觀察培養基渾濁度、pH變化(黃色變紫)及細胞形態(如顆粒增多、崩解),若懷疑污染,立即丟棄細胞并底消毒超凈臺(75%酒精擦拭+紫外線照射30分鐘)。
培養基中添加1%雙抗(青霉素-鏈霉素)作為預防,但長期使用可能篩選耐藥菌,建議僅在污染高發期使用。
支原體污染
定期檢測(如PCR法或熒光染色法),若陽性則用5-10μg/mLBM-Cyclin處理2-3周,同時更換所有培養用品(包括培養基、血清、槍頭)。
三、異常增殖:控制傳代周期與密度
過密生長抑制
當細胞融合度達80%-90%時及時傳代,避免接觸抑制失效導致細胞堆疊、形態異常(如多核化)。
若細胞已堆疊,可用0.02%EDTA短暫處理(1-2分鐘)分散細胞團,再重新鋪板。
遺傳漂變干預
每10-15代凍存一支原始細胞株,避免長期培養導致基因型漂移(如增殖速度加快、藥物敏感性改變)。
若細胞出現自發轉化(如形成克隆島、接觸抑制消失),建議更換新復蘇的細胞株。
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