在細胞體外培養中，污染如同潛伏的“隱形殺手”，時刻威脅著實驗的準確性與穩定性。在最常見的三大污染源——支原體、細菌和真菌中，支原體污染以 30%-60% 的超高污染率，成為科研人員最頭疼的難題之一。本期細胞學堂，我們將全-方位解析支原體污染的防治要點，助你輕松應對這一實驗室“頑疾”，為細胞培養實驗保駕護航。

自然界中支原體種類超過120種，而細胞培養中常見污染菌株主要包括牛精氨酸支原體、發酵支原體、豬鼻支原體、人口腔支原體、牛無膽甾支原體等。這些菌株污染細胞后，會引發細胞一系列特征性改變，包括：

這些變化缺乏特異性，但會干擾細胞正常生理狀態，導致實驗結果失真甚至錯誤。由于支原體的直徑僅0.1-0.3 μm，遠小于常規細胞，且無細胞壁，折光性極低，因此難以通過普通光學顯微鏡識別。加之其對青霉素等常用抗生素具有耐藥性，進一步增加了污染檢測和清除的難度。因此，上述細胞表型的異常改變往往成為污染的早期預警信號—— 當細胞出現不明原因的生長或形態異常時，需優先排查支原體污染可能。

表1. 支原體檢測方法對比

支原體的耐受溫度范圍在35-37℃，將污染的細胞置于41℃處理5-10 h（最長不超過18 h），可以殺滅支原體。但不同的細胞對高溫的耐受程度不同，此方法可能損傷細胞，需要慎重使用。

支原體對部分抗生素（如卡那霉素、慶大霉素、多西環素、四環素、環丙沙星等）具有一定的敏感性。將細胞培養在含抗生素的培養基中傳代培養，連續多次檢測支原體為陰性，即清除成功。但過度使用抗生素可能誘導耐藥或毒性反應，需謹慎操作。

推薦使用復合型支原體清除試劑，其通常含有抗生素和支原體脂蛋白膜穿透劑，能破壞支原體的脂蛋白膜、干擾其代謝途徑、抑制DNA復制，從而達到清除支原體的目的。推薦產品：普諾賽Anti-Myc 支原體清除試劑（貨號：P-CMR-001）。按照說明書將適量試劑加入細胞培養基孵育，即可清除支原體。該方法操作簡便、效果-顯著，且對細胞的毒性相對較小，能較好地保持細胞的活性。

對清除支原體后的細胞，需通過 qPCR、DNA熒光染色等方法進行檢測，確認支原體是否已被完-全清除，避免試劑殘留或支原體復蘇導致假陰性結果。