為研究免疫細胞的功能，常需高純度的淋巴細胞或其亞群，分離方法介紹如下。

一、純淋巴細胞群的采集

      通常利用單核細胞在37℃和Ca2+存在條件下，能主動粘附在玻璃、塑料、尼龍膜、棉花纖維或葡聚糖凝膠的特性，據此建立許多從單個核細胞懸液中去除單核細胞的方法，藉以獲得高純度的淋巴細胞群。

（一）粘附貼壁法

       將已制備的單個核細胞懸液傾于玻璃或塑料平皿或扁平小瓶中，移至37℃溫箱靜置1h左右，單核細胞和粒細胞均貼于平皿壁上，而未貼壁的非粘附細胞幾乎為純淋巴細胞，繼用橡皮刮下貼壁的細胞即為純單核細胞群。因B細胞也有貼壁現象，用本法分離的淋巴細胞群中B細胞有所損失。

（二）吸附柱過濾法

       將單個核細胞懸液注入裝有玻璃纖維或葡聚糖凝膠SephadexG10的柱層中，凡有粘附能力的細胞絕大部分被吸附而粘滯在柱層中，從柱上洗脫下來的細胞主要是淋巴細胞。此法簡單易行，對細胞極少損害。

（三）磁鐵吸引法

       利用單核細胞具有吞噬的特性，在單個核細胞懸液中加直徑為3μm的羰基鐵顆粒，置37℃溫箱內短時旋轉搖動，待單核細胞充分吞噬羰基鐵顆粒后，用磁鐵將細胞吸至管底，上層液中含較純的淋巴細胞。

二、淋巴細胞亞群的分離

       分離相當純化的淋巴細胞亞群是細胞免疫檢驗的基本技術。其原則是根據相應細胞的特性和不同的標志加以選擇性純化。凡根據細胞的特性和標志選擇純化所需細胞的方法是陽性選擇法；而選擇性去除不要的細胞，僅留下所需的細胞是為陰性選擇。常用以下幾種方法：

（一）E花環沉降法

       本法是將淋巴細胞與一定比例的綿羊紅細胞混合，待淋巴細胞形成E花環后，繼用淋巴細胞分層液分離細胞。浮懸在分層界面而不形成E花環的群則富含B細胞，而沉降在管底的形成E花環的細胞用低滲法處理，使圍繞細胞周圍的綿羊紅細胞快速裂解，則獲得純的T細胞。

索萊寶自產 綿羊紅細胞 需要現采集，貨期一周，儲存溫度2～8℃，保質期30天，現定現用。

（二）尼龍毛分離法

      本法利用B細胞和單核細胞具有易粘附于尼龍纖維表面的特性，可將T和B細胞分開。操作原則是取松散而經過處理的尼龍毛（聚酰胺纖維），均勻充填在內徑5～6nm的聚乙烯塑料管（飲料管即可）內，經Hanks液浸透保溫，將單個核細胞懸液加入柱內，放37溫箱靜置1～2h。用預溫的含10％～20％小牛血清培養液灌洗，洗脫液內含有非粘附的T細胞，重復灌洗幾次以除去管內殘留的T細胞。再用冷或溫培養液邊沖邊洗邊擠壓塑料管，此時洗脫液內富含B細胞。如此得到的T細胞純度在90％以上，B細胞純度可達80％。

（三）親和板結合分離法

       利用親和層析法分離淋巴細胞亞群，其原理是各種淋巴細胞亞群具有不同的抗原性，將相應抗體結合于塑料平板上，繼加細胞懸液，凡抗原陽性的細胞則與相應抗體結合，抗原陰性的細胞可從未吸附的細胞懸液中獲取。同樣若用特異性抗原交聯在塑料板上，則可分離得具有特異抗原受體的淋巴細胞。淋巴細胞受體與特異抗原或抗體接觸，可引起細胞激活，因此，凡欲去除細胞懸液內某一細胞亞群時，本法更適用。如要分離CD4+或CD8+細胞，則可用抗CD4或CD8單克隆抗體吸附。用抗Ig抗體則可分離B細胞。同樣，用活化的C3包被，可分離出有C3受體的細胞

（四）熒光激活細胞分離儀分離法

       熒光激活細胞分離儀（fluorescenceactivatedcellsorter，FACS）主要由4部分組成：①細胞流動系統及氣壓流速控制系統，②激光系統，③檢測與訊號處理系統，④細胞分選系統。其主要原理是細胞經熒光染色后，通過高速流動系統，細胞排成單行，逐個流經檢測區進行測定。當細胞從流動室噴嘴處流出時，超聲振蕩攪動液流，使液流斷裂成一連串的均勻小滴（40000個/s），每小滴內多含一個細胞（其中只有百分之幾的液滴中含細胞），細胞經激光束照射產生熒光和散射光，由光電倍增管接收，轉換成脈沖信號，數據經電腦處理，分辨細胞的類型。如識別的是預計所需的細胞時（如T細胞、B細胞要其亞群），在細胞樣品流斷裂成小滴時，使液滴瞬即感應陽電荷、陰電荷或不帶電荷，使所需的細胞在電場偏轉下進入不同的收集管。用FACS分離細胞準確快速，能保持細胞活力，并可在無菌條件下進行，但儀器昂貴，極少用于常規，而多數僅作為研究的手段。

News1：索萊寶即將推出全新人全血外周淋巴細胞分離液產品，新產品更加穩定，操作簡便，*，敬請期待！