抗體分泌與特異性：穩定分泌 IgG2a 型單克隆抗體，分泌量達 40μg/10?細胞 / 天（ST-2014S 無抗體分泌功能）；通過 Western blot 驗證，僅與 PCV2 Cap 蛋白（28kDa）特異性結合，與 PCV1、PRRSV 等病毒無交叉反應，與 PCV2 不同亞型（a/b/c/d）的交叉識別率達 99%，顯著優于多克隆抗體。

抗原識別表位：識別 Cap 蛋白的構象表位（第 130-150 位氨基酸），該區域為 PCV2 衣殼蛋白的中和抗體結合位點，與病毒粒子的結合率達 95%（ST-2014S 感染的 PCV2 驗證）；競爭實驗證實，4H11 抗體可阻斷 PCV2 對 ST-2014S 細胞的吸附（抑制率達 80%），具備中和活性。

免疫學檢測性能：在間接 ELISA 中，抗體效價達 1:256000，檢測 PCV2 的線性范圍 0.1-100ng/mL；在免疫熒光實驗中，與 ST-2014S 感染的 PCV2 共定位率達 98%，熒光強度是多克隆抗體的 3 倍，適合病毒定位與定量分析。

ELISA 檢測試劑盒：以 4H11 抗體為捕獲抗體構建雙抗夾心 ELISA，檢測 ST-2014S 培養的 PCV2 靈敏度達 0.1ng/mL，批內變異系數＜4%，與豬血清中 PCV2 的檢出符合率達 96%（傳統方法為 82%）。該試劑盒已實現產業化，使 PCV2 檢測時間從 48 小時縮短至 2 小時，基層獸醫站普及率達 60%。

免疫組織化學診斷：在 PCV2 相關疾病（如斷奶仔豬多系統衰竭綜合征）病理切片中，4H11 抗體可特異性標記病毒抗原，陽性信號主要定位于淋巴結與腎臟（與 ST-2014S 的病毒增殖規律一致），陽性強度與疾病嚴重程度正相關（R2=0.93），為臨床分型提供依據。

疫苗效價評估：作為 PCV2 疫苗效價檢測的標準抗體，4H11 可通過中和實驗測定疫苗的保護力，與 ST-2014S 細胞配合使用，中和抗體效價與仔豬攻毒保護率的相關性達 95%（傳統方法為 75%），被農業部列為疫苗批簽發強制檢測方法。

疫苗生產監控：在 ST-2014S 細胞的 PCV2 疫苗生產中，4H11 抗體用于監測病毒增殖動態，可精準確定收獲時間（病毒滴度達 10?.? TCID??/mL 時），較經驗性收獲提高疫苗產量 20%，降低生產成本 15%。

病毒入侵路徑解析：利用 4H11 抗體的中和活性，發現 PCV2 通過與 ST-2014S 細胞表面的硫酸乙酰肝素結合入侵（阻斷后入侵率下降 75%），且該過程依賴細胞內吞（與網格蛋白共定位率達 85%），揭示 PCV2 的宿主細胞入侵機制，研究結果與在體實驗一致性達 90%。

病毒變異監測：通過 4H11 抗體與不同 PCV2 分離株的結合力測定，發現 2018 年后流行的 d 亞型 Cap 蛋白第 145 位氨基酸突變可使結合力下降 30%，提示疫苗株需針對性更新，該發現已指導 3 家疫苗企業完成毒株升級。

培養基：RPMI-1640 培養基添加 10% 胎牛血清、1% 非必需氨基酸，pH 維持在 7.2-7.4；為提高抗體產量，可添加 5ng/mL IL-6（ST-2014S 無需此添加），使分泌量提升 25%，適合大規模培養。

傳代與放大：當細胞密度達 1×10?個 /mL 時，按 1:5 比例稀釋傳代（無需離心），24 小時存活率超 95%；放大培養采用搖瓶懸浮培養，5L 搖瓶最大細胞密度可達 2×10?個 /mL，抗體總產量是 ST-2014S 培養的 10 倍（按單位體積計）。

凍存與復蘇：采用含 15% DMSO 的wan全培養基，細胞密度 5×10?個 /mL，程序降溫至 - 80℃過夜后轉入液氮，復蘇時 37℃水浴 1 分鐘，存活率可達 90%，需通過 ELISA 驗證抗體效價（應≥1:128000）。

抗體純化：采用 Protein G 親和層析柱純化，純度達 99%，內毒素含量＜0.05EU/mg，適合體內中和實驗；純化抗體在 4℃可穩定保存 6 個月，-20℃保存 2 年活性無顯著下降。

病毒中和實驗：在 ST-2014S 細胞中，4H11 抗體（10μg/mL）可使 PCV2 的 TCID??下降 10?倍，中和效價測定的變異系數＜6%，適合疫苗中和抗體滴度檢測。

優勢：

局限性：