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BY-0971 TKMp97-12小鼠L細胞系

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TKMp97-12小鼠L細胞系

TKMp97-12小鼠L細胞系是遺傳學與細胞生物學研究中的重要模型,以胸腺嘧啶激酶(TK)缺陷型為核心特征,兼具穩定的貼壁生長特性和明確的基因表型,在基因突變檢測、藥物敏感性篩選及 DNA 損傷修復機制研究中應用廣泛,為解析遺傳變異與藥物效應的關聯提供了可靠實驗載體。

來源與背景:該細胞系源自小鼠 L 細胞(L929 細胞的衍生株),通過化學誘變篩選獲得 TK 基因功能缺陷的克隆株。L 細胞是 1943 年建立的首ge永生化小鼠成纖維細胞系,而 TKMp97-12 通過甲基磺酸乙酯(EMS)誘變,導致 TK1 基因第 4 外顯子發生錯義突變,喪失胸腺嘧啶激酶活性。TK 缺陷型細胞因無法利用外源性胸腺嘧啶合成 DNA,需依賴內源性途徑存活,這一特性使其成為 HAT 選擇培養基(含氨基蝶呤、胸腺嘧啶)中篩選雜交細胞的理想親本,至今仍是基因互補實驗和突變研究的經典模型。
細胞特性:形態上呈典型成纖維細胞樣,貼壁生長時呈長梭形或多邊形,排列疏松,細胞質均勻,細胞核呈橢圓形,核質比約 1:3,5% 細胞可見雙核,體現成纖維細胞的形態特征。核心特性突出:TK 缺陷穩定,胸腺嘧啶激酶活性僅為野生型 L 細胞的 3%,無法在含 5 - 溴脫氧尿苷(BrdU)的培養基中存活,突變表型經 60 代傳代仍保持穩定;增殖能力穩健,體外倍增時間約 28 小時,克隆形成率 45%,細胞群體倍增數可達 100 代以上,遠高于普通原代成纖維細胞;基因可塑性強,可通過轉染恢復 TK 表達,轉染效率達 30%,且恢復后的細胞能在 HAT 培養基中正常生長,為基因功能互補實驗提供便利。傳代時采用常規消化液處理 3 分鐘,傳代比例 1:4-1:6,細胞密度達 80% 時需傳代,過度密集會使細胞形態變為多角形,增殖速率下降 20%。
培養條件:基礎培養采用含 10% 胎牛血清的 MEM 培養基,添加 1% 雙抗,37℃、5% CO?飽和濕度環境。關鍵培養要點:營養需求特殊,因 TK 缺陷需優化營養成分,否則會導致細胞活力下降 40%;選擇壓力維持,長期培養需添加 15μg/ml BrdU,淘汰可能恢復 TK 功能的回復突變細胞(發生率約 10??);貼壁依賴顯著,培養皿需預包被明膠(0.1%),可使細胞貼壁率提升至 95%,否則易發生脫壁凋亡。凍存采用含 10% DMSO 的胎牛血清凍存液,程序降溫后液氮保存,復蘇后 24 小時貼壁率達 85%,TK 缺陷表型不變。
檢測鑒定:微生物檢測無支原體、細菌污染,符合實驗細胞標準。功能鑒定顯示,在 HAT 培養基中無法存活(存活率 < 1%),而在含胸腺嘧啶的培養基中生長正常,證實 TK 缺陷型;Western blot 檢測不到 TK 蛋白表達,RT-PCR 顯示 TK1 基因 mRNA 水平為野生型的 5%,確認為轉錄后缺陷。染色體核型為近二倍體(眾數 40-42),存在 11 號染色體長臂缺失(含 TK1 基因座位),與誘變導致的基因缺失特征一致。STR 分型與 L 細胞系匹配率 99%,排除交叉污染可能。
應用領域:在基因突變研究中,作為 TK 基因突變檢測模型,紫外線照射可使該細胞的 TK 回復突變率升高 15 倍,通過克隆形成實驗可量化基因突變頻率,為環境誘變劑的風險評估提供依據。在藥物篩選方面,作為抗代謝藥物的敏感性模型,相關藥物對其半數抑制濃度(IC50)為 0.8μM,遠低于 TK 正常細胞(IC50=12μM),可用于相關藥物的藥效評估。在 DNA 修復機制研究中,發現該細胞對烷化劑的敏感性是野生型的 3 倍,因缺乏 TK 介導的堿基切除修復途徑,證實 TK 在 DNA 損傷修復中的非催化功能。此外,該細胞系可用于基因互補實驗,轉染人源 TK 基因后,對 BrdU 的抗性恢復,為人類 TK 基因的功能驗證提供了跨物種模型。
與其他 L 細胞衍生株相比,TKMp97-12 的優勢在于 TK 缺陷的穩定性和基因背景明確性,回復突變率僅為同類細胞系的 1/5。通過該細胞系的研究,已建立 3 種基因突變檢測方法,推動 5 種抗代謝藥物進入臨床前評估,為遺傳毒理學和精準藥學研究提供了重要實驗工具。

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